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近日,国际著名期刊《Journal for ImmunoTherapy of Cancer》(IF=10.6/Q1)发表题为“Integrative multiomic profiling of cfDNA methylation and EV-miRNAs identifies immunotherapy-outcome molecular subtypes in NSCLC”的前瞻性纵向队列研究成果,通过基于液体活检的多组学整合分析,为非小细胞肺癌(NSCLC)免疫治疗(IT)患者寻找更精准的预后和预测生物标志物。

研究团队纳入79例接受免疫检查点抑制剂(ICI)治疗的转移性NSCLC患者,在治疗前基线(T1)、第二周期后(T2)、6个月(T3)和1年(T4)四个时间点采集血浆样本,创新性利用cfDNA EM-seq技术对血浆游离DNA(cfDNA)进行甲基化(cfMeth)分析和细胞外囊泡(EV)相关microRNA(EV-miRNA)测序分析。通过多组学因子分析(MOFA2)无监督整合方法,研究在T1和T2两个关键时间点分别鉴定出三种具有显著差异生存结局的分子亚型(MOFA-Derived Clusters, MDCs)。这些亚型不仅在生物学上具有一致性(如与血管生成、免疫信号通路相关),而且其预后价值在独立的外部队列中得到验证,证实MDC分类的临床相关性和时间稳定性,为NSCLC免疫治疗精准分层提供基于液体活检的多组学解决方案。

DOI:10.1136/jitc-2025-013592

标题:cfDNA甲基化和EV-miRNAs的综合多组学分析确定NSCLC中与免疫治疗结果相关的分子亚型

发表时间:2026-1-16

发表期刊:J Immunother Cancer

影响因子:IF10.6/Q1

技术平台:全基因组cfDNA甲基化测序(EM-seq)、miRNA-seq

研究方法

(1)队列与样本

前瞻性纳入79名接受ICIs(单药或联合化疗)治疗的晚期NSCLC患者。在四个时间点(T1治疗前基线、T2第二周期后、T3 6个月、T4 1年)采集外周血。定义原发性耐药(6个月内进展)和非耐药患者。

(2)多组学综合分析

cfDNA EM-seq甲基化分析:同时检测5mC和5hmC两种修饰。定制靶向捕获panel包含344个基因(含2,276个启动子区域)和841个增强子,测序深度500X,测序后进行差异甲基化区域(DMR)分析。

EV-miRNA分析:从血浆中分离EVs,提取总RNA后测序和差异表达分析。

多组学整合:MOFA2无监督整合。首先,筛选与总生存期(OS)或无进展生存期(PFS)显著相关的分子特征。然后,分别对T1和T2时间点数据构建独立MOFA2模型,提取潜在因子。最后,对潜在因子进行聚类,得到MOFA衍生簇(MDCs)。

(3)外部验证

分别对两个组学进行独立验证,通过监督学习模型将MDC标记比对至外部验证队列样本,并进行生存分析。

关键结果

(1)临床特征与多组学模型构建

研究队列包含79名患者,其中55名腺癌,24名非腺癌。在T1(基线)和T2(第二周期后)时间点,分别有71和65份血浆样本用于分析。通过单变量Cox回归筛选,T1模型纳入136个miRNAs和298个cfMeth特征,T2模型纳入81个miRNAs和714个cfMeth特征。MOFA2模型构建后,T1模型解释了miRNA数据23%的变异和cfMeth数据25%的变异;T2模型解释了miRNA数据25%和cfMeth数据50%的变异。表明cfDNA甲基化(cfMeth)在T2时间点(治疗早期)的变异解释度更高,提示治疗可能诱导了更显著的表观遗传重塑。

图1:T1和T2模型的多组学整合与潜在因子构成

(2)MOFA2鉴定出三种具有不同临床结局的潜在分子亚型

基于MOFA2潜在因子的PAM聚类在两个时间点均鉴定出三个分子亚型(MDC1、MDC2、MDC3)。T1模型中(图2),MDC1-T1(n=24)表现为F1和F3高评分,MDC3-T1(n=14)与F2呈强负相关,MDC2-T1(n=33)为中间型。网络分析揭示9个核心EV-miRNA构成调控模块,其中hsa-miR-23b、hsa-miR-200c-3p、hsa-miR-200b-5p和hsa-miR-200a在所有因子中呈正加载,而hsa-miR-451a则表现相反模式。

T2模型中(图3),MDC1-T2(n=21)F2低/F4中等,MDC2-T2(n=20)F4高,MDC3-T2(n=22)F1和F4降低。网络分析鉴定出四个关键miRNA(hsa-miR-6873-3p、hsa-miR-539-5p、hsa-miR-615-3p、hsa-miR-1185-2-3p)。

生存分析显示(图4),T1模型三组间OS和PFS差异显著:MDC1-T1预后最差(中位PFS 4.54个月,OS 7.64个月),MDC2-T1预后居中(PFS 12.23个月,OS 19.71个月),MDC3-T1预后最好(PFS 28.89个月,OS 40.79个月)。T2模型呈现二元风险分层:MDC1-T2和MDC2-T2组成低生存组(中位PFS 4.66/7.71个月,OS 7.78/9.9个月),MDC3-T2为高生存组(PFS和OS均为28.89/40.79个月)。

这些亚型由不同的潜在因子驱动,例如T1模型中,hsa-miR-200c-3p和IQCE、DEDD2等基因的甲基化区域是关键驱动因子。cfDNA EM-seq技术精准捕获这些与预后相关的差异甲基化区域,为区分不同亚型提供关键的表观遗传学证据。

图2:T1 MOFA2模型的综合潜在结构和多组学表征

图3:T2 MOFA2模型的综合潜在结构与多组学表征

图4:基于基线(T1)和早期治疗(T2)时MOFA2衍生的分子亚型(MDCs)生存分析

(3)MOFA衍生簇在T1-T4样本中的纵向比对

为评估MDC的时间稳定性,研究将T1和T2模型的分子特征比对到其他时间点的样本上(图5)。结果发现,T2模型(MDC-T2)的比对表现更稳健。将MDC-T2标签比对到T1、T3样本后,仍能显著区分患者的OS和PFS(图5D),而T1模型的效果较弱。这些结果表明,治疗早期(T2)建立的分子特征比基线特征更能反映治疗适应状态,具有更优的跨时间预后一致性,提示cfDNA甲基化和EV-miRNA在治疗早期的动态变化蕴含了关键的疗效预测信息。

图5:MDC的纵向比对将OS中的NSCLC患者分层

(4)MDC-T1和MDC-T2亚型的多组学分子表征

差异分析揭示各亚型的分子特征。在T1模型中,预后最差的MDC1-T1以miRNA驱动的血管生成、组织重塑和细胞骨架动态通路激活为特征,而cfMeth数据贡献较少。预后最好的MDC3-T1则表现为miRNA和cfMeth层面的低通路激活,但高表达hsa-miR-451a和hsa-miR-4732-5p等有利miRNA。

在T2模型中,预后最好的MDC3-T2显示出强烈的免疫相关和组织重塑通路激活。cfDNA EM-seq技术还发现,BLK和ADARB2基因的甲基化区域在预后好的亚型(MDC3-T1和MDC3-T2)中高甲基化,而在预后差的亚型中低甲基化(图6B),提示这些基因的表观遗传沉默可能与更好的免疫治疗结局相关。

图6:MDC亚型在单一组学分析的关键分子特征及GO功能分析。

  1. 在T1和T2时间点单一组学差异表达分析和MOFA2整合模型中,五种最一致富集的EV-miRNA表达谱。
  2. 两个持续差异甲基化区域(注释为BLK和ADARB2)在各MDC亚型中的甲基化水平。
  3. MDC-T1和MDC-T2中差异表达miRNA和差异甲基化区域的GO通路功能富集热图。

(5)MDC亚型的流式细胞术免疫表型与临床特征

流式细胞术分析(图7)揭示MDC各亚型的系统性免疫表型差异。在T1模型中,预后最好的MDC3-T1表现出更高的细胞毒性CD8+ T细胞丰度和更低的调节性T细胞(Tregs)比例(图7A),提示其具有更有效的抗肿瘤免疫环境。在T2模型中,预后好的MDC3-T2的CD4+ T细胞频率更高,而预后差的MDC1-T2则表现出更高的耗竭性CD8+PD-1+ T细胞比例(图7B)。这些免疫表型与分子亚型的预后分层高度一致,进一步验证MDC的生物学和临床相关性。

图7:流式细胞术分析MDC亚型中的免疫表型

(6)外部验证证实MDC亚型的临床相关性

在独立的外部队列中,MDC的预后价值得到了验证。在SMC队列(肿瘤组织甲基化数据)中,MDC-T2模型可以显著区分患者的PFS(p=0.026),MDC3-T2预后最好(图8A)。在Genova队列(EV-miRNA数据)中,MDC-T2模型同样显著区分患者的OS和PFS,MDC3-T2再次被证实为预后最佳组(图8C)。尽管验证存在样本类型(组织vs血浆)和技术平台(芯片vs测序)的差异,但MDC-T2的稳健性得到了充分证明,揭示了其潜在的临床转化价值。

图8:MDCs在独立cfMeth和miRNA队列中的外部验证。

  1. 基于SMC数据集MDC-T1和MDC-T2亚型预测的PFS Kaplan-Meier曲线(肿瘤组织甲基化,n=57)。
  2. 基于Genova等队列中MDC-T1亚型预测的OS和PFS分层(EV-miRNA,n=54)。
  3. 基于Genova等队列中MDC-T2亚型预测的OS和PFS分层,Kaplan-Meier曲线展示生存分布。

结论和启示

本研究证明,整合cfDNA甲基化(EM-seq)和EV-miRNA的液体活检多组学分析能够有效捕捉NSCLC免疫治疗患者的分子异质性,鉴定出差异生存结局和免疫表型的MDC亚型。这些亚型参与血管生成、免疫调控和细胞骨架重塑等生物学过程,并在纵向样本和外部队列中得到验证。多组学整合框架提供了比单一组学更精细的分层,揭示了肿瘤-免疫动态互作的新见解。

参考文献:Onieva JL, Pérez-Ruiz E, Figueroa-Ortiz LC, Jurado JM, Martínez B, Carlos Benítez J, Rueda-Domínguez A, Barragán I. Integrative multiomic profiling of cfDNA methylation and EV-miRNAs identifies immunotherapy-outcome molecular subtypes in NSCLC. J Immunother Cancer. 2026 Jan 16;14(1) doi: 10.1136/jitc-2025-013592.

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